總的原則:無菌操作、保證細胞培養環境的穩定性
按時間順序整理
1、 細胞房和生物安全柜(或超凈工作臺)先開紫外照射30min。作用:對環境滅菌(空氣)。(備注:如果著急,至少也要開15分鐘)
在做實驗之前考慮好需要哪些物品。開始照射之前,將所需要用到的物品都放到生物安全柜(或超凈工作臺)里面。
常用移液槍或電動移液器等,需要在工作臺上放置一套專用設備。
細胞培養箱一般都已經調整好。定期留意一下二氧化碳是否足夠。不夠及時更換。
2、 顯微鏡需要定期消毒酒精擦拭。注意:顯微鏡一般都放在細胞房。
3、 進入實驗之前,首先給自己帶上拖鞋、頭套,口罩,實驗服,手套(手套帶雙層)。注意:手套要將袖口套進去。實驗服、拖鞋最好是細胞房專用。
4、 開始操作之前先觀察細胞。
首先觀察細胞培養液的顏色。現在的細胞培養液通常都放有酸堿指示劑(絕大部分是酚紅)。細胞在培養生長過程中,不斷在培養液上清中累積酸性物質,時間長了,培養液變為黃色(同時培養液中營養物質耗盡)。
其次鏡下觀察細胞的生長狀態是否良好,是否需要傳代。如果生長狀態不好,需要對培養液進行調整(一般是加大血清濃度)。過于密集出現大片融合或太密集而導致細胞脫落,則進行傳代。
如果長勢良好,且細胞培養液顏色未發生變化,可以酌情進行1/2、 1/3、1/4換液,也可以全換液。總之,視細胞生長情況而定。
5、 細胞培養預準備:
首先是準備各種溶液。
第一是配制溶液過程中要用到的水。水用純水,高壓滅菌之后,再去內毒素。去內毒素方法很多,簡單可以放在烘箱180度3小時。或者過去內毒素的柱子后,高壓滅菌。
第二,各種溶液滅菌:
抗生素用去內毒素水配制后,直接過濾除菌(過0.22u濾頭)。可以用一次性無菌注射器過一次性0.22u濾頭。
現在用的培養液,如果是商業化液體培養基,不用處理。如果是粉末,需要用去內毒素水在生物安全柜(或超凈工作臺)進行配制,再過濾除菌。可以先配濃縮液(如10×),過濾除菌后。再用滅菌去內毒素水稀釋成1×培養液。
第三,*培養液的配制:
培養液加上合適比例的血清即可。但血清一般保存于-20℃,一般解凍是放在4℃冰箱解凍,耗時長,而且必須解決*之后,才能進行*培養基的配制。所以要提前幾個小時就將血清從-20℃轉入4℃,以期*解凍。當然如果這一次就需要用完的話(是指用這些血清配制的培養液都用完),也可以放到37℃解凍。
第四,最重要的是保證過程中無菌。
液體必須要分裝。無論過程中用到的培養液、胰酶、血清、PBS、生理鹽水、抗生素盡量分裝。分裝是為了防止污染。如果操作有誤,僅能威脅到其中一支,而非整個。
培養液、血清、PBS、生理鹽水分裝為20mL、50mL或100mL/管
胰酶、抗生素可分裝為1mL/管。
分裝最好先于細胞操作
第五,操作之前,培養液先放到37度的細胞培養箱里復溫。原因:盡量減少對細胞的刺激。低溫對于細胞也是一個刺激因素。
第六,操作之前,大腦先過一遍此次操作所需要用到的所有用具。將所有用具先放到無菌臺面上。減少拿入拿出的動作,保證無菌。(如果萬一發現少拿了什么,也不要緊,再加上就是。如果是槍頭盒、移液管等用具,最好先用消毒酒精噴一下)。
第七,操作之前,帶著的手套先噴消毒酒精。然后再進入工作臺。等一分鐘,等手套上的酒精揮發之后再進行操作。
6、 細胞培養操作過程;
7、 收拾工作臺。物品歸位,倒出垃圾。再開紫外照射30min
8、 其它注意事項:
第一,經常觀察。最好是每天都顯微鏡下看一看,確定細胞狀態。然后該換液換,該傳代傳,不用理會的就原樣放回去。如果好幾天都不想理會,可以放不*培養基,或者低血清濃度的培養液,維持細胞生存,但不增殖。
第二,是否加抗生素。這個視情況而定。細胞培養過程中,是要求盡量少添加不相關的雜質。抗生素對于細胞來說,也是一種負擔。但如果環境比較污染,直接添加好了。好比沒病不用吃藥,感冒了還是要吃藥;嬰兒沒病但還是要打疫苗。
第三,胎牛血清的解凍。血清一般保存于-20℃,要放在4℃冰箱解凍,耗時長,500mL要好幾個小時,我們經常是頭天離開實驗室之前放到4℃冰箱,過夜。所以經常分裝成10mL或者20mL。這樣,上午放到4℃冰箱,下午就可以用了。
第二,是否一定要細胞房。以及是否要*嚴格的遵守種種器具專用。這個吧,見仁見智。凡所有種種措施及設備都是為了保證培養操作過程中無菌,減少感染的機率;專用試劑耗材保證無菌無內毒素。細胞房也是這么一個措施而已,其它試劑耗材也是;我們沒有專門的細胞房也這么養。
剛開始我們實驗室也是沒有專用的生物安全柜和細胞房,拖鞋什么的也沒辦法專用,沒有加抗生素,照樣養得好好的。但是,交叉養,還是需要注意,一是時間上分隔開來:每天細胞培養先操作。其它細菌之類操作靠后,且操作后消毒酒精臺面消毒,紫外照射1小時。二是其它操作要小心,避免帶入污染。當然,如果有必要加抗生素,還是盡早加,比細胞污染了再去搶救要來得好。
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